- ลักษณะของรอยเปื้อนเลือด
- ประเภทของการละเลงเลือด
- เทคนิคการเก็บตัวอย่างเลือด
- เทคนิคการเตรียมเลือดสเมียร์
- - สไลด์รอยเปื้อน
- ชิ้นส่วนของสเมียร์ที่ทำบนสไลด์
- การควบคุมคุณภาพในเทคนิคการสไลด์
- - ขั้นตอนบน Coverslip
- การควบคุมคุณภาพในเทคนิค Coverslip
- - ด้วยอุปกรณ์อัตโนมัติ
- เทคนิคการละเลงหนา
- เปื้อนคราบ
- Giemsa คราบ
- ไรท์คราบ
- ประเภทของรอยเปื้อนที่มีข้อบกพร่อง
- ทาบริเวณที่มีความหนาต่างกัน (บางและหนาสลับกัน)
- สเมียร์สเมียร์สั้นมาก
- ทาด้วยพื้นที่ที่มีรอยขูดตรงส่วนท้ายของสเมียร์
- ทาด้วยการก่อตัวของแวคิวโอลหรือบริเวณที่โค้งมนหรือรูปไข่ที่ชัดเจน
- รอยเปื้อนหนามากหรือบางมาก
- จุลกายวิภาคศาสตร์เนื้อเยื่อ
- -Erythrocytes หรือเม็ดเลือดแดง
- - เม็ดเลือดขาวหรือเม็ดเลือดขาว
- นิวโทรฟิลแบบแบ่งส่วน
- อีโอซิโนฟิลแบบแบ่งส่วน
- แบ่งกลุ่ม basophils
- เซลล์เม็ดเลือดขาว
- monocytes
- -Platelets
- องค์ประกอบทางพยาธิวิทยา
- ปรสิตในเลือด
- แบคทีเรีย
- เซลล์ที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะ
- อ้างอิง
การสเมียร์เลือดคือการสเมียร์เลือดที่ใช้ในการวิเคราะห์ส่วนประกอบที่มีอยู่ในการไหลเวียนโลหิต การสังเกตการสเมียร์เลือดให้ข้อมูลทางโลหิตวิทยาที่มีประโยชน์มากสำหรับการวินิจฉัยและการติดตามพยาธิสภาพต่างๆ
การตรวจเลือดทำให้สามารถหาจำนวนเม็ดเลือดขาวชนิดต่างๆได้ (สูตรเม็ดโลหิตขาว) รวมถึงวิเคราะห์ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและรูปร่างของเม็ดเลือดแดงเม็ดเลือดขาวและเกล็ดเลือด
การเตรียมเลือดสเมียร์ ที่มา: เลือดในแก้วห้องปฏิบัติการ โดเมนสาธารณะ
ในนั้นสามารถตรวจพบความผิดปกติของจำนวนเซลล์เช่น: leukocytosis หรือ leukopenias, lymphocytosis หรือ lymphopenia, neutrophilia หรือ neutropenia, thrombocytosis หรือ thrombocytopenias และ eosinophilia นอกจากนี้ยังอาจเห็นความผิดปกติของขนาดและรูปร่างของเซลล์
นอกจากนี้ยังสามารถตรวจพบ anemias, leukemias และการติดเชื้อแบคทีเรียหรือปรสิตในเลือดหลายชนิด
สำหรับสิ่งนี้มีการทารอยเปื้อนหลายประเภทขึ้นอยู่กับวัตถุประสงค์ของการศึกษา มีรอยเปื้อนบาง ๆ และรอยเปื้อนหนา รอยเปื้อนเหล่านี้แตกต่างกันในเทคนิคการดำเนินการและวัตถุประสงค์ของการศึกษา
ยาหยอดละเอียดใช้เป็นยาเสริมเพื่อให้โลหิตวิทยาสมบูรณ์ ข้อมูลนี้ให้ข้อมูลเกี่ยวกับสูตรเม็ดเลือดขาวนอกเหนือจากการวิเคราะห์รูปร่างและสัณฐานวิทยาของชุดเซลล์ทั้งสามที่ประกอบกันเป็นเลือด: ชุดสีแดงชุดสีขาวและเกล็ดเลือด แม้ว่าพวกเขาจะทำหน้าที่เป็นส่วนเสริมในการศึกษาภาพยนตร์เลือดข้น
ฟิล์มหนาใช้สำหรับการวินิจฉัยโรคที่เกิดจากเม็ดเลือดเช่นมาลาเรียหรือมาเลเรียทอกโซพลาสโมซิส leishmaniasis โรค Chagas Babesiosis และ microfilariasis
ลักษณะของรอยเปื้อนเลือด
การสเมียร์เลือดที่ดีต้องเป็นไปตามลักษณะบางอย่าง ในหมู่พวกเขาเราสามารถพูดถึง:
- ตัวอย่างต้องเป็นไปตามข้อกำหนดคุณภาพขั้นต่ำเพื่อเป็นตัวแทน
- การสุ่มตัวอย่างต้องได้รับการดำเนินการอย่างดี
- ดำเนินการละเลงได้ทันเวลา
- หากทำด้วยเลือดดำให้ใช้ยาต้านการแข็งตัวของเลือดที่ไม่ทำให้เซลล์เสียรูปและผสมท่อก่อนทำการสเมียร์
- หากทำด้วยเลือดฝอยให้ทิ้งหยดแรก
- การแพร่กระจายต้องเป็นเนื้อเดียวกัน เพื่อให้แน่ใจว่าเซลล์มีการกระจายอย่างสม่ำเสมอและสามารถวิเคราะห์รูปร่างและจำนวนเม็ดเลือดได้ดี
- ด้านข้างของรอยเปื้อนควรเรียบตั้งแต่ต้นจนจบ
- สเมียร์ต้องมีระยะขอบ 1 ถึง 2 มม. ที่ด้านข้างของสไลด์
- ชั้นสเมียร์ควรค่อยๆลดความหนาลงจากจุดเริ่มต้นไปยังจุดสิ้นสุด (ทาด้วยวิธีการสไลด์)
- ต้องติดฉลากอย่างถูกต้องเพื่อหลีกเลี่ยงความสับสนของตัวอย่าง
- แก้ไขและย้อมสีอย่างเหมาะสมเพื่อการสังเกตองค์ประกอบของเลือดอย่างชัดเจน
- ปล่อยให้สเมียร์แห้งสนิทก่อนที่จะทำการติดตั้งภายใต้กล้องจุลทรรศน์ การวางน้ำมันแช่ลงบนสเมียร์ที่เปียกจะทำให้เกิดการก่อตัวของไมเซลล์ที่ทำให้ไม่สามารถมองเห็นเซลล์ได้
ประเภทของการละเลงเลือด
รอยเปื้อนเลือดส่วนปลายแบ่งได้เป็นสเมียร์บาง ๆ และสเมียร์หนา ผู้ที่มีชั้นบาง ๆ จะใช้สำหรับการศึกษาสูตรของเม็ดโลหิตขาวและการสังเกตลักษณะทางสัณฐานวิทยาของเซลล์เม็ดเลือด นอกจากนี้ยังสามารถมองเห็นแบคทีเรียนอกเซลล์เช่นบอร์เรเลียและเซลล์สร้างเม็ดเลือดในเซลล์เช่นพลาสโมเดียมเป็นต้น
ในหยดละเอียดสามารถระบุชนิดของปรสิตได้ดังนั้นจึงเป็นเทคนิคที่เฉพาะเจาะจงมากกว่าหยดที่หนา แต่หยดที่หนามีความไวมากกว่าเนื่องจากเป็นเทคนิคความเข้มข้นที่ใช้สำหรับการค้นหาเม็ดเลือดนอกเซลล์อย่างละเอียดถี่ถ้วน
รอยเปื้อนแบบละเอียดมีสองประเภท ได้แก่ แบบที่ทำบนสไลด์และแบบที่ทำบนแผ่นปิด รอยเปื้อนหนาจะดำเนินการบนสไลด์
เทคนิคการเก็บตัวอย่างเลือด
รอยเปื้อนเลือดสามารถทำได้จากการเจาะเส้นเลือดฝอยหรือตัวอย่างหลอดเลือดดำที่ได้รับยาต้านการแข็งตัวของเลือด หากทำจากเลือดด้วยยาต้านการแข็งตัวของเลือดสามารถเตรียมสเมียร์ได้ภายใน 2 ชั่วโมงหลังจากรับตัวอย่าง
ข้อควรระวังในการใช้ยาต้านการแข็งตัวของเลือดที่ไม่ทำให้เซลล์เม็ดเลือดเสียรูป ตัวเลือกที่ดีที่สุดคือ EDTA ในทางตรงกันข้ามควรหลีกเลี่ยงการใช้ยาต้านการแข็งตัวของเลือดเช่นไตรโซเดียมซิเตรต
หากนำตัวอย่างมาโดยการเจาะเส้นเลือดฝอยควรทำการขยายสเมียร์ทันทีก่อนที่เลือดจะอุดตัน
ควรทิ้งหยดแรกโดยปล่อยให้หยดถัดไปหลุดออกไปเองเพื่อหลีกเลี่ยงการเจือจางของตัวอย่างด้วยของเหลวในเนื้อเยื่อ เป็นเทคนิคที่แนะนำมากที่สุดสำหรับการสังเกตลักษณะทางสัณฐานวิทยาของเซลล์เนื่องจากเลือดไม่มีสารปรุงแต่งใด ๆ
สำหรับการสังเกต hemoparasites Solari et al. สรุปในงานวิจัยของพวกเขาว่าทั้งสองเทคนิค (การเจาะเลือดและเส้นเลือดฝอย) มีประสิทธิภาพเท่าเทียมกัน
ประเภทของการสุ่มตัวอย่างเลือดก. เจาะเส้นเลือดฝอย. B. การเจาะเลือดดำ ที่มา: ก. Flickr.com ข. pxhere.com
เทคนิคการเตรียมเลือดสเมียร์
การตรวจเลือดสามารถทำได้ด้วยตนเองบนสไลด์ด้วยกล้องจุลทรรศน์หรือบนฝาปิดหรือสไลด์ นอกจากนี้ยังเป็นไปได้ผ่านอุปกรณ์อัตโนมัติ
- สไลด์รอยเปื้อน
เป็นเทคนิคที่ห้องปฏิบัติการส่วนใหญ่ต้องการเนื่องจากใช้งานง่าย
ใช้ปิเปตของปาสเตอร์วางหยดเลือดที่ไม่หนาหรือละเอียดมากตรงกลางปลายด้านหนึ่งของสไลด์ที่สะอาด
สเมียร์ทำด้วยความช่วยเหลือของสไลด์อื่นที่มีปลายกราวด์ แผ่นกระจกกราวด์วางตั้งฉากกับปลายอีกด้านของจุดที่หล่น
มันเอียงทำมุมระหว่าง 30 - 45 °และร่อนเข้าหาหยด เมื่อสัมผัสมันจะขยายเป็นเส้นตรงเหนือขอบของกราวด์สไลด์และด้วยการเคลื่อนที่ที่คงที่และกำหนดไว้แผ่นจะกลับ ก่อนถึงจุดสิ้นสุดสไลด์จะถูกยกขึ้น
ด้วยวิธีนี้ชั้นที่เป็นเนื้อเดียวกันจะถูกกระจายไปทั่วพื้นผิวของสไลด์รับ
อนุญาตให้ทาให้แห้ง จากนั้นได้รับการแก้ไขและย้อมด้วยคราบที่ต้องการ ปล่อยให้แห้งก่อนดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์ หยดน้ำมันวางบนใบหน้าเพื่อแสดงรอยเปื้อนและสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง
เลือดเปื้อนบนสไลด์ ภาพด้านบน: รอยเปื้อนที่ไม่ย้อมสี ภาพล่าง: รอยเปื้อนสี ที่มา: Coinmac
ชิ้นส่วนของสเมียร์ที่ทำบนสไลด์
ในการสเมียร์ประเภทนี้สามารถแยกแยะพื้นที่ที่กำหนดได้สามส่วน ได้แก่ หัวลำตัวและหาง ศีรษะตรงกับบริเวณที่เริ่มมีรอยเปื้อนเป็นบริเวณที่หนาที่สุดและไม่ควรสังเกต
ร่างกายเป็นส่วนที่เป็นศูนย์กลางหรือตรงกลางของสเมียร์ซึ่งเป็นบริเวณที่ดีที่สุดในการสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์เนื่องจากมีการกระจายเซลล์อย่างสม่ำเสมอและยังคงรักษาสัณฐานวิทยาไว้
หางตรงกับส่วนสุดท้ายของรอยเปื้อน ที่นี่การกระจายจะไม่สม่ำเสมออีกต่อไปและสัณฐานวิทยาของเม็ดเลือดแดงมีแนวโน้มที่จะหายไป
การควบคุมคุณภาพในเทคนิคการสไลด์
ในเทคนิคนี้มีบทบาทพื้นฐาน:
- การทำความสะอาดและการล้างไขมันของสไลด์: รับประกันการเลื่อนที่ดีของตัวอย่าง
- ขนาดของหยด: เมื่อหยดขนาดใหญ่มากจะได้สเมียร์ที่หนาขึ้นและยาวขึ้นโดยการลดลงเล็กน้อยการแพร่กระจายจะสั้นลงและดีมาก
- ความเร็วที่ใช้ในการขยาย: ยิ่งความเร็วต่ำลงการสเมียร์ก็จะยิ่งบางลงความเร็วก็จะยิ่งหนาขึ้นเท่านั้น
- มุมของการดำเนินการ: ยิ่งมุมเล็กลงเท่าไหร่ก็ยิ่งมีรอยเปื้อนมากขึ้นเท่าไหร่มุมก็จะยิ่งหนาขึ้นเท่านั้น
- ขั้นตอนบน Coverslip
ไม่ได้ใช้กันอย่างแพร่หลายเนื่องจากการจัดการฝาปิดที่เปราะบางนั้นยุ่งยาก แต่ก็มีข้อดีอย่างมากเนื่องจากจะได้รับการกระจายตัวของเซลล์ที่ดีขึ้นตลอดการละเลง
หยดที่ไม่หนามากไม่ละเอียดมากวางไว้ตรงกลางของฝาปิด ทันทีอีกอันหนึ่งจะถูกวางไว้ด้านบนของสิ่งนี้ในลักษณะที่ปลายของลิปทั้งสองยื่นออกมาเป็นรูปดาว
หยดจะกระจายไปตามพื้นผิวของฝาปิดทั้งสองข้างตามธรรมชาติ ในตอนท้ายของส่วนขยายแต่ละสไลด์จะเลื่อนไปทางด้านตรงข้ามกัน (อันหนึ่งไปทางขวาและอีกอันไปทางซ้าย) อย่างรวดเร็ว
เทคนิคนี้ให้สองสเมียร์แทนหนึ่ง
วางไว้ให้แห้งโดยหงายด้านขึ้น เมื่อแห้งแล้วจะได้รับการแก้ไขและย้อมสีด้วยเทคนิคที่เลือก ปล่อยให้แห้ง หยดน้ำมันแช่ลงบนสไลด์สเมียร์วางโดยให้ด้านที่ละเลงลงและมองด้วยกล้องจุลทรรศน์
การควบคุมคุณภาพในเทคนิค Coverslip
เพื่อให้ได้สเมียร์ที่ดีสำหรับเทคนิคนี้สิ่งสำคัญคือ:
- การทำความสะอาดฝาปิด (ช่วยให้สไลด์ตัวอย่างราบรื่น)
- ขนาดของหยด (มีผลต่อความหนาของรอยเปื้อน)
- ความเร็วในการแยกฝาปิด (มีผลต่อความสม่ำเสมอของการแพร่กระจาย)
- ด้วยอุปกรณ์อัตโนมัติ
สามารถทำได้ผ่านทีมเหล่านี้: Spinner และ Autoslide
Spinner ประกอบด้วยการวางสไลด์ที่มีหยดเลือดบนจานหมุนเหวี่ยงพิเศษ ตัวอย่างถูกหมุนเหวี่ยงด้วยความเร็วสูง ด้วยวิธีนี้จะเกิดการละเลงของตัวอย่างที่เป็นเนื้อเดียวกันและละเอียด มันมีข้อเสียของความเป็นไปได้ของการแตกของตัวอย่าง
Autoslide เป็นเครื่องมือที่ใช้ในการเคลื่อนไหวโดยอัตโนมัติสำหรับการดำเนินการสเมียร์บนสไลด์ คุณยังสามารถแก้ไขและย้อมรอยเปื้อนได้ สามารถปรับให้เข้ากับเคาน์เตอร์โลหิตวิทยาอัตโนมัติบางชนิดได้
เทคนิคการละเลงหนา
ในการค้นหา hemoparasites ขอแนะนำให้ใช้สองสเมียร์: หนึ่งหยดละเอียดและอีกอันที่มีหยดหนา
ทำการเจาะเส้นเลือดฝอยทำความสะอาดหยดแรก วางหยดลงบนสไลด์และทาตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ สำหรับลูกปัดแบบหนาให้วางลูกปัดขนาดใหญ่บนสไลด์อื่นแล้วแผ่เป็นสี่เหลี่ยมจัตุรัส 1.55 มม. ปล่อยให้รอยเปื้อนทั้งสองแห้ง
เปื้อนคราบ
คราบ Giemsa หรือ Wright และอื่น ๆ สามารถใช้สำหรับหยดละเอียดได้ แนะนำให้ใช้คราบ Giemsa หรือ May-Grunwald Giemsa สำหรับรอยเปื้อนหนา ๆ
Giemsa คราบ
รอยเปื้อนได้รับการแก้ไขเป็นเวลา 3 นาทีด้วยเมทานอลระบายและปล่อยให้แห้งอีกครั้ง จากนั้นทาด้วยคราบ Giemsa ประมาณ 10-15 นาที ล้างด้วยน้ำกลั่นและปล่อยให้แห้ง หากต้องการสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์จะมีหยดน้ำมันแช่อยู่
ไรท์คราบ
รอยเปื้อนถูกปกคลุมด้วยคราบของไรท์เป็นเวลา 5 นาที ทิ้งและวางสารละลายบัฟเฟอร์ที่ pH 6.8 เป็นเวลา 6 นาที เป่าเตรียมให้เป็นเนื้อเดียวกัน ล้างด้วยน้ำกลั่นและปล่อยให้แห้ง สังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์
ประเภทของรอยเปื้อนที่มีข้อบกพร่อง
มันเกิดขึ้นกับผู้เข้ารับการฝึกอบรมในเทคนิคการหยอดละเอียดด้วยสไลด์
ทาบริเวณที่มีความหนาต่างกัน (บางและหนาสลับกัน)
เป็นเพราะการเคลื่อนไหวที่ดำเนินการไม่คงที่ในระหว่างการแพร่กระจายทำให้หยุดและเริ่มต้นใหม่
สเมียร์สเมียร์สั้นมาก
พวกเขามี 2 สาเหตุสาเหตุหนึ่งเกิดจากการที่พื้นดินสไลด์ถูกยกขึ้นก่อนที่จะไปถึงปลายอีกด้านของสไลด์ ในกรณีนี้มีความหนาและสั้นมาก
ในทางกลับกันถ้าสเมียร์สั้น แต่บางนั่นเป็นเพราะขนาดของหยดเล็กมาก
ทาด้วยพื้นที่ที่มีรอยขูดตรงส่วนท้ายของสเมียร์
มีสาเหตุหลายประการ: หนึ่งคือขอบกราวด์มีข้อบกพร่องความดันที่กระทำต่อสไลด์รับจะเพิ่มขึ้นในขณะที่กางออกหรือทำให้ขอบพื้นของสไลด์สึก
ทาด้วยการก่อตัวของแวคิวโอลหรือบริเวณที่โค้งมนหรือรูปไข่ที่ชัดเจน
เกิดจากการใช้คราบมันเยิ้ม (ล้างและล้างไขมันได้ไม่ดี)
รอยเปื้อนหนามากหรือบางมาก
หยดที่ใหญ่เกินไปจะทำให้เกิดรอยเปื้อนที่หนามากตั้งแต่ต้นจนจบและหยดที่มีขนาดเล็กมากจะทำให้เกิดรอยเปื้อนที่ละเอียดมาก
จุลกายวิภาคศาสตร์เนื้อเยื่อ
เม็ดเลือดสามารถมองเห็นได้จากการตรวจเลือด ในหมู่พวกเขา ได้แก่ :
-Erythrocytes หรือเม็ดเลือดแดง
เลือดของมนุษย์เม็ดเลือดแดงหรือเม็ดเลือดแดงและเซลล์เม็ดเลือดขาวสองเซลล์ นำมาและแก้ไขจาก: Viascos ข้อสังเกตของคุณมีความสำคัญสูงสุด ในระดับนี้สามารถตรวจพบ anemias ธาลัสซีเมียโรคไขกระดูก ฯลฯ
จำนวนเม็ดเลือดแดงหรือเม็ดเลือดแดงอยู่ที่ประมาณ 5 x 10 6 mm3 ในผู้ชายและ 4.5 x 10 6ในผู้หญิง เซลล์เม็ดเลือดแดงมีรูปร่างเหมือนแผ่นไบคอนเคฟโดยมีสีซีดทางสรีรวิทยาส่วนกลาง พวกเขาสามารถมองเห็นแยกกัน (ปกติ) หรือสร้างกองรูลอว์ (ผิดปกติ)
รอยเปื้อนยังแสดง poikilocytosis (เซลล์เม็ดเลือดแดงที่มีรูปร่างต่าง ๆ ), anisocytosis (เม็ดเลือดแดงขนาดต่างๆ), anisopoikilocytosis (รูปร่างและขนาดต่างๆ), anisochromia (สีต่างกัน), เม็ดเลือดแดง (เม็ดเลือดแดงที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะ), microcytosis (เม็ดเลือดแดงขนาดเล็ก) ) และ macrocytes (เม็ดเลือดแดงขนาดใหญ่)
เมื่อพวกเขามีการขาดปริมาณฮีโมโกลบินและสีซีดส่วนกลางเพิ่มขึ้นกล่าวกันว่ามีภาวะ hypochromia เมื่อสังเกตเห็นชุดสีแดงปกติจะรายงานว่าเป็น normocytic และ normochromic
- เม็ดเลือดขาวหรือเม็ดเลือดขาว
เซลล์เม็ดเลือดขาว
ปริมาณปกติอยู่ระหว่าง 5,000 ถึง 10,000 มม. 3 . มีการเปลี่ยนแปลงในกระบวนการติดเชื้อในโรคภูมิแพ้และมะเร็งเม็ดเลือดขาว สามารถแยกแยะได้หลายประเภทในการตรวจเลือดซึ่งจะอธิบายไว้ด้านล่าง
นิวโทรฟิลแบบแบ่งส่วน
พวกมันเป็นตัวแทน 55-65% ของเม็ดเลือดขาวทั้งหมด วัดได้ระหว่าง 10-15 μm พวกมันมีนิวเคลียสที่แบ่งส่วนหรือเป็นตุ้มซึ่งใช้ลักษณะทางสัณฐานวิทยาที่แตกต่างกันจึงเรียกว่า polymorphonuclear
พวกมันมีเม็ดนิวโทรฟิลิกจำนวนมากในไซโตพลาสซึมและอะซูโรฟิลบางชนิด เพิ่มการติดเชื้อแบคทีเรีย (นิวโทรฟิเลีย) ลดการติดเชื้อไวรัส (นิวโทรพีเนีย)
สามารถสังเกตความผิดปกติทางสัณฐานวิทยาเช่น pleokaryocytosis (hyper-segmented nuclei), arches (immature cells) หรือ macro-polices (รูปไข่และใหญ่)
การเปลี่ยนแปลงอื่น ๆ :
- แกรนูลที่เป็นพิษ
-Pseudo Pelger neutrophils (นิวเคลียสไม่มี lobulations หรือเป็น bilobed)
- ร่างกายDöhle: การรวมไซโตพลาสซึมสีน้ำเงินเข้ม
- เพิ่ม cytoplasmic basophilia
-Intracytoplasmic vacuoles.
-Cellular picnosis (การสูญเสียสะพานภายในนิวเคลียร์)
อีโอซิโนฟิลแบบแบ่งส่วน
เป็นตัวแทนของเม็ดเลือดขาว 1-3% ของเซลล์เม็ดเลือดขาวทั้งหมด วัดได้ 9-10 μm พวกเขามีลักษณะเฉพาะด้วยการปรากฏตัวของแกรนูลไซโตพลาสซึมที่เป็นกรดและอะซูโรฟิลเพียงเล็กน้อย นิวเคลียสของมันมีสอง lobulations จำนวนของพวกเขาเพิ่มขึ้นในการแพ้และโรคที่มาจากปรสิต
แบ่งกลุ่ม basophils
หายากมากคิดเป็น 0-1% ของเม็ดเลือดขาว วัดได้10-12μm โดยปกตินิวเคลียสจะมีความผิดปกติในระยะขอบและอาจมีรูปร่างเป็นแท่ง แต่มองไม่เห็นเนื่องจากมีแกรนูลหยาบ basophilic จำนวนมากในไซโทพลาซึม น้อยครั้งมากที่จะเห็น basophilia
เซลล์เม็ดเลือดขาว
พวกมันเป็นเซลล์ขนาดเล็กที่มีไซโทพลาสซึมเบโซฟิลิกโดยมีนิวเคลียสที่มีลักษณะกลมและมีโครมาตินควบแน่น นิวเคลียสครอบคลุมเกือบทั้งเซลล์ เป็นตัวแทนของเม็ดเลือดขาวในเลือด 26-40% เพิ่มการติดเชื้อไวรัส (lymphocytosis) ลิมโฟไซต์ที่มีปฏิกิริยาสามารถมองเห็นได้
monocytes
เซลล์ที่มีขนาดใหญ่กว่าลิมโฟไซต์โดยมีไซโทพลาสซึมที่ใหญ่กว่าและมีนิวเคลียสโครมาตินรูปไข่ วัดได้9-12μm ไซโทพลาสซึมมีมากมายและมักจะปรากฏเป็นสีน้ำเงินอมเทาซีดด้วยเทคนิคการย้อมสีมาตรฐาน monocytes Vacuolated และ monocytosis สามารถสังเกตได้จากการเปลี่ยนแปลง
-Platelets
วัดได้ระหว่าง 1.5-3 μm รูปร่างของมันกลมหรือรี ค่าปกติอยู่ระหว่าง 150,000 ถึง 350,000 เกล็ดเลือด / ลบ.ม. สามารถลดการติดเชื้อไวรัสบางชนิดได้ พวกมันไม่มีนิวเคลียสและมีสีม่วง ความผิดปกติอาจพบได้ในชุดนี้เช่นเกล็ดเลือดมาโครหรือขนาดเล็กภาวะเกล็ดเลือดต่ำหรือภาวะเกล็ดเลือดต่ำและเศษของเกล็ดเลือด
องค์ประกอบทางพยาธิวิทยา
ปรสิตในเลือด
Hemoparasites เช่นสาเหตุของโรคมาลาเรียหรือมาลาเรีย (ปรสิตในสกุล Plasmodium) อาจพบได้ในคราบเลือด ด้วยเหตุนี้จึงเป็นสิ่งสำคัญที่จะต้องทำการวิเคราะห์สเมียร์ด้วยตนเองเนื่องจากอุปกรณ์อัตโนมัติพลาดการค้นพบนี้
แบคทีเรีย
ในโรคเช่นไข้กำเริบหรือโรค Lyme สามารถสังเกตสาเหตุของโรคได้ ในกรณีนี้จะสอดคล้องกับ Borrelia revrenti spirochetes และ Borrelia burgdorferi ในการละเลงเลือด
เซลล์ที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะ
พบกรณีที่รุนแรงในมะเร็งเม็ดเลือดขาวปฏิกิริยาของมะเร็งเม็ดเลือดขาวและปฏิกิริยาเม็ดเลือดขาวและอื่น ๆ ในการติดเชื้อแบคทีเรียอาจมีการเบี่ยงเบนไปทางซ้ายเล็กน้อย (มีข้อพับ) อาจพบเม็ดเลือดแดงในดอกไม้ทะเลบางชนิด
อ้างอิง
- เลือดและเนื้อเยื่อเม็ดเลือด มีจำหน่ายที่: sld.cu
- Gomez A, Casas M. 2014. Angel. การตีความทางห้องปฏิบัติการทางคลินิก ฉบับที่ 8. บทบรรณาธิการMédica Panamericana
- Solari Soto L, Soto Tarazona A, Mendoza Requena D, Llanos Accounts A. การเปรียบเทียบความหนาแน่นของปรสิตในเลือดดำที่ลดลงเมื่อเทียบกับการกดจุดในการวินิจฉัยมาลาเรีย vivax Rev Med Hered 2002; 13 (4): 140-143. มีจำหน่ายที่: scielo.org
- Terry Leonard Nelson, Mendoza Hernández Carlos ความสำคัญของการศึกษาการเปื้อนเลือดส่วนปลายในผู้สูงอายุ Medisur 2017; 15 (3): 362-382 มีจำหน่ายที่: scielo.sld
- Grinspan S. การศึกษาการเปื้อนเลือดส่วนปลาย การศึกษาต่อเนื่องทางการแพทย์. มีจำหน่ายที่: bvs.hn/RMH